Investigadores crean evolución guiada por luz para proteínas dinámicas

Científicos de la EPFL han desarrollado una técnica llamada optovolución, que utiliza la luz para evolucionar proteínas que cambian de estado, detectan entornos y realizan cálculos. Al ingeniar células de levadura para que sobrevivan solo si las proteínas se comportan de manera dinámica, el método selecciona variantes óptimas rápidamente. El enfoque, publicado en Cell, avanza la biología sintética y la optogenética.

La evolución en la naturaleza da forma a los sistemas biológicos mediante la selección de variaciones efectivas en ADN, ARN y proteínas. Los humanos han influido en este proceso durante mucho tiempo, desde la cría selectiva en la agricultura hasta la evolución dirigida moderna en laboratorios, que mejora proteínas como enzimas y anticuerpos para la medicina e industria. Tradicionalmente, la evolución dirigida aplica una presión constante, favoreciendo proteínas activas todo el tiempo. Esto pasa por alto las necesidades dinámicas de muchas proteínas, que actúan como interruptores o compuertas lógicas en respuesta a condiciones cambiantes. Tales métodos a menudo degradan las capacidades de conmutación, complicando la creación de proteínas multiestado. Para abordar esto, Sahand Jamal Rahi y colegas del Laboratorio de Física de Sistemas Biológicos de la EPFL introdujeron la optovolución. Publicado en Cell el 9 de marzo de 2026, el estudio detalla cómo la luz dirige la evolución de proteínas para funciones dinámicas. Usando la levadura de gemación Saccharomyces cerevisiae, los investigadores rediseñaron el ciclo celular para que la división dependa de la capacidad de una proteína para conmutar entre estados activo e inactivo. Un regulador ligado a la proteína controla el ciclo: esencial en una fase pero tóxico en otra. Las proteínas que no conmutan correctamente detienen o matan la célula. La optogenética entrega pulsos de luz temporizados para alternar estados, con cada ciclo de 90 minutos probando el rendimiento. Las proteínas exitosas permiten la supervivencia y reproducción, automatizando la selección sin intervención manual. La optovolución produjo 19 variantes de un factor de transcripción controlado por luz, mostrando mayor sensibilidad a la luz, menor actividad en la oscuridad o respuesta a luz verde —desafiante para colores más cálidos—. También evolucionó un sistema de luz roja independiente de cofactores químicos, mediante una mutación que desactiva una proteína de transporte de levadura para utilizar moléculas internas. Además, el equipo creó un factor de transcripción que actúa como una compuerta lógica, activando genes solo con señales de luz y químicas simultáneas. Esto permite que las proteínas detecten cambios, tomen decisiones celulares y controlen la división, abriendo vías en biología sintética, biotecnología e investigación evolutiva. Colaboradores incluyen el Laboratorio de Ingeniería de Proteínas y Células de la EPFL, la Universidad de Bayreuth y el Hospital Universitario de Lausana. La referencia de la revista es Vojislav Gligorovski et al., 'Light-directed evolution of dynamic, multi-state, and computational protein functionalities,' Cell, 2026, DOI: 10.1016/j.cell.2026.02.002.

Artículos relacionados

Realistic microscopic view of DNA damage and real-time repair in a living cell using a new fluorescent sensor.
Imagen generada por IA

Científicos desarrollan sensor de células vivas para observar la reparación del ADN en tiempo real

Reportado por IA Imagen generada por IA Verificado por hechos

Investigadores de la Universidad de Utrecht han creado un sensor fluorescente que permite a los científicos observar el daño y la reparación del ADN en tiempo real dentro de células vivas e incluso en organismos completos. Construido a partir de componentes de una proteína celular natural, esta herramienta ofrece vistas continuas de la dinámica de reparación minimizando la interferencia con los mecanismos propios de la célula. El trabajo, publicado en Nature Communications, podría ayudar en la investigación del cáncer, pruebas de fármacos y estudios sobre el envejecimiento.

Investigadores de la Universidad de Nueva York han desarrollado un método para dirigir el ensamblaje de partículas microscópicas en cristales usando luz. Esta técnica, detallada en la revista Chem, permite un control en tiempo real del crecimiento y la disolución de cristales. El enfoque podría habilitar nuevos materiales responsivos para aplicaciones en óptica y fotónica.

Reportado por IA Verificado por hechos

Investigadores del Cold Spring Harbor Laboratory han identificado proteínas clave y complejos proteicos que ayudan a ciertos carcinomas a cambiar su identidad celular y potencialmente evadir el tratamiento. Dos nuevos estudios, centrados en el cáncer de páncreas y el cáncer de pulmón de células en penacho, destacan estructuras moleculares que podrían convertirse en objetivos para terapias más precisas y selectivas.

Investigadores de Penn State informan sobre una defensa bacteriana que reutiliza ADN viral inactivo: una enzima recombinasa llamada PinQ invierte un tramo del genoma para producir proteínas protectoras que bloquean la infección, trabajo descrito en Nucleic Acids Research.

Reportado por IA Verificado por hechos

Científicos de Scripps Research informan que algunos condensados biomoleculares —compartimentos celulares sin membrana, similares a gotas— contienen redes de filamentos proteicos delgados que actúan como un andamio interno. El equipo dice que alterar esta arquitectura de filamentos modifica las propiedades físicas de los condensados e perjudica el crecimiento bacteriano y la segregación del ADN, lo que plantea la posibilidad de que la estructura de los condensados pueda ser un objetivo terapéutico en enfermedades como el cáncer y la ELA. El estudio apareció en Nature Structural & Molecular Biology el 2 de febrero de 2026.

Científicos han propuesto un modelo teórico que explica cómo las células vivas podrían producir sus propias señales eléctricas mediante pequeños movimientos en sus membranas. Este mecanismo, impulsado por procesos moleculares activos, podría imitar la actividad neuronal e influir en el transporte de iones. Los hallazgos podrían informar materiales bioinspirados y profundizar la comprensión de las funciones celulares.

Reportado por IA

Los investigadores han descubierto que el ADN en huevos recién fertilizados forma un armazón 3D estructurado antes de que se active el genoma, desafiando suposiciones arraigadas. Usando una nueva técnica llamada Pico-C, los científicos mapearon esta organización en embriones de mosca de la fruta. Un estudio relacionado muestra que alterar esta estructura en células humanas desencadena una respuesta inmune como si estuviera bajo ataque viral.

 

 

 

Este sitio web utiliza cookies

Utilizamos cookies para análisis con el fin de mejorar nuestro sitio. Lee nuestra política de privacidad para más información.
Rechazar